细胞融合方法主要包括物理法、化学法及生物法等。其中,物理法如电融合和激光融合,化学法则以聚乙二醇(PEG)融合法为代表。此外,还有使用灭活仙台病毒的生物法。PEG是一种在分子量200~700时呈无色、无臭粘稠液体,而分子量大于1000时则呈乳白色蜡状固体,能够溶于水及多种有机溶剂,且在热稳定性方面表现良好。一般选用分子量为4000的PEG作为细胞融合剂,常用浓度为50%,pH范围在80~82(可通过10% NaHCO3调整)。较小分子量的PEG会导致融合效果不佳,且存在一定毒性,而过大的分子量则使得操作不便。研究发现,50%的PEG浓度和偏碱性pH条件下的融合效果最佳。为了改善融合效果,有时还会结合使用30%~50%浓度的PEG和10%二甲亚砜。然而,不同批次的PEG,即便分子量相同,融合率也可能存在显著差异,因此在选用时需特别注意,并确保在每批试剂使用前均进行细胞毒性测试。此外,购入时应选择高纯度的PEG,通常以气相色谱用PEG为最佳选择。
在融合方法上,常用的有转动法和离心法。在细胞融合过程中,脾细胞与骨髓瘤细胞的比例可为1:1至10:1,其中3:1或5:1的比例最为常见。
人生就是博-尊龙凯时,以下是实验所需的试剂与材料:
(1) 脾细胞及骨髓瘤细胞;
(2) 1640培养液100ml;
(3) 完全1640液100ml;
(4) 25% FCS-1640液50ml;
(5) HAT培养液100ml;
(6) 50% PEG:高纯度分子量4000的PEG(日本进口或Serva)10g,放入25ml瓶中高压灭菌,使用前混合等量的预热于40℃的1640液10ml;
(7) 10ml和50ml的灭菌沉淀管或瓶;
(8) 40孔塑料培养盘。
操作步骤如下:
- 准备好脾细胞。
- 在50ml沉淀管中混合108脾细胞和107小鼠骨髓瘤细胞,并加入50ml的25% FCS-1640液。
- 在室温下以400g离心3分钟,使细胞沉淀。
- 移除上清液。
- 轻敲沉淀管底部,使沉淀松散,然后将沉淀管放置在40℃水浴中,达到融合温度。
- 加入预热至40℃的50% PEG 0.8ml,并用1ml吸管逐滴加入,同时轻轻摇动沉淀管,观察到颗粒出现,滴加时间约为2分钟。
- 加入1ml 1640液,并继续摇动,持续1分钟。
- 重复第7步一次。
- 再次加入1ml 1640液,边加边摇动,持续0.5分钟。
- 再重复第9步一次。
- 加入15ml 1640液。
- 在室温下以400g离心1分钟,使细胞沉淀。
- 去掉上清液,轻敲管底部,加入25ml的含有HAT的完全1640液。
- 向已经种有饲养细胞的40孔培养盘中加入融合的细胞液,每孔一滴(约0.05ml)。
- 轻摇后,放入5% CO2饱和湿度的37℃恒温箱中培养。
- 在第3、6、9、10天更换为含HAT的完全1640培养液。在更换液体时注意温和吸取上清,避免吸出固定在孔底的细胞,并根据需要加入适量的饲养细胞。
- 在第12、15天再次添加含HAT的完全1640培养液。每次换液之前使用倒置显微镜观察,通常在10天左右可见杂交瘤细胞的生长,大部分细胞将在10日至20天内出现,但也有一些可能在一个月后才逐渐显现。出现杂交瘤细胞后应吸取上清液以检查抗体。
- 对继续生长的杂交瘤细胞进行增殖传代。在传代过程中,可视情况取消HAT液和完全1640液,更换为10% FCS-1640液。同时进行液氮保存和克隆化,每代都需检查抗体,以防止抗体细胞的变异和丢失。
在进行细胞融合的过程中,有几个关键因素需要关注:
(1) 技术误差常常导致融合失败,例如供体淋巴细胞未能引发免疫应答,这可能导致实验失败;
(2) 融合实验的一大失败原因是污染,因此在实验操作中必须提供一个无污染且无菌的环境。
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